ncRNA干貨 | 探索遺傳信息“噪音基因”-LncRNA的生物學(xué)調(diào)控
上一期內(nèi)容為大家介紹了非編碼RNA調(diào)控概述?,本期將從LncRNA的簡介分類、功能、常用數(shù)據(jù)庫、研究思路及功能調(diào)控等為大家詳細(xì)介紹非編碼RNA調(diào)控系列之LncRNA的調(diào)控。
LncRNA的簡介及分類
? ? 1.LncRNA的簡介
長鏈非編碼RNA(Long non-coding RNA, LncRNA),一般指基因長度大于200nt的長鏈非編碼RNA的統(tǒng)稱。LncRNA主要是RNA聚合酶II轉(zhuǎn)錄的副產(chǎn)物,最早被認(rèn)為基因組轉(zhuǎn)錄中的“噪音”片段,因此被認(rèn)為不具有生物學(xué)功能。然而近年研究中發(fā)現(xiàn),LncRNA是真核生物生命活動的重要組成部分[1]。LncRNA在1991年首次被證實(shí)參與X染色體沉默,隨后被證實(shí)具有染色質(zhì)修飾、轉(zhuǎn)錄調(diào)控、ceRNA調(diào)控等多種調(diào)控過程,LncRNA的調(diào)控作用也開始成為近年來研究的熱點(diǎn)。
2.LncRNA的分類
LncRNAs一般可根據(jù)其自身結(jié)構(gòu)、定位、功能或與DNA/RNA/蛋白互作功能進(jìn)行分類。我們今天主要介紹通過其相對于附近蛋白質(zhì)編碼基因的基因組位置[2],LncRNAs可分為:
1) 正義LncRNAs:與鄰近蛋白編碼基因轉(zhuǎn)錄方向相同,與編碼基因的一個/多個外顯子重疊;
2) 反義LncRNAs:與鄰近蛋白編碼基因轉(zhuǎn)錄方向相反,與相反鏈上的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物部分或完全互補(bǔ);
3) 內(nèi)含子LncRNAs:來源于編碼基因的內(nèi)含子,由基因的內(nèi)含子轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生;
4) 基因間LncRNAs:由編碼基因之間的序列獨(dú)立轉(zhuǎn)錄;
5) 雙向LncRNAs:可同時從與鄰近蛋白編碼基因轉(zhuǎn)錄方向相同和相反2個方向發(fā)生轉(zhuǎn)錄;
6) 增強(qiáng)子LncRNAs:由蛋白質(zhì)編碼基因的增強(qiáng)子區(qū)域產(chǎn)生。
圖1. LncRNA基因組位置分類[3]
LncRNA的相關(guān)功能介紹
LncRNA不只是基因組中的承接序列,更多是承擔(dān)了各種DNA、RNA及蛋白間調(diào)控功能的重要遺傳信息。LncRNA發(fā)揮功能主要依靠其二級結(jié)構(gòu),與蛋白質(zhì)結(jié)合,可引起染色質(zhì)重構(gòu)、轉(zhuǎn)錄功能調(diào)控等。還可以通過ceRNA競爭機(jī)制,與靶基因mRNA競爭性結(jié)合miRNA,間接影響靶基因表達(dá)量。也可以通過與編碼蛋白基因的mRNA形成互補(bǔ)鏈,影響其剪切或翻譯結(jié)果。因此LncRNA的生物學(xué)功能明確了許多基因組復(fù)雜性表達(dá)調(diào)控的難題,接下來我們詳細(xì)的探索下LncRNA的主要功能:
圖2. LncRNA基因功能[3]
1.LncRNA表觀遺傳學(xué)調(diào)控1)LncRNA可以通過RNA-DNA或RNA-染色質(zhì)相互作用,發(fā)揮表觀遺傳學(xué)調(diào)控功能。
2)LncRNA可以是染色質(zhì)重塑蛋白打開或關(guān)閉染色質(zhì)的支架。LncRNA通過共價修飾途徑直接與組蛋白或DNA修飾酶相互作用;也可以通過非共價調(diào)控,依賴ATP調(diào)控染色質(zhì)重塑。
2.LncRNA轉(zhuǎn)錄翻譯調(diào)控
1)LncRNA可以通過順式/反式調(diào)節(jié)影響成熟mRNA的穩(wěn)定性、差異剪接、修飾的編輯等。
2)LncRNA可以通過在翻譯過程中與核糖體或mRNA轉(zhuǎn)錄物結(jié)合來調(diào)節(jié)mRNA的翻譯。
3)LncRNA可以是轉(zhuǎn)錄因子激活/抑制的支架,其與轉(zhuǎn)錄因子的作用調(diào)控主要體現(xiàn)在LncRNA與蛋白的互作。由于LncRNA較長,確定LncRNA的作用區(qū)域是研究LncRNA-蛋白互作機(jī)制的關(guān)鍵步驟。
3.ceRNA機(jī)制調(diào)控LncRNA通過堿基互補(bǔ)配對原則結(jié)合miRNA種子區(qū)域序列競爭性地吸附miRNA,從而阻斷miRNA與下游靶基因的結(jié)合,進(jìn)而影響下游靶基因表達(dá)量的變化。作為競爭性內(nèi)源性RNA,LncRNA可以導(dǎo)致miRNA功能的喪失或降低,并影響miRNA對靶基因的調(diào)控作用。
4.LncRNA編碼蛋白LncRNA一般被認(rèn)為在轉(zhuǎn)錄本中缺少開放閱讀框,不能被翻譯成蛋白質(zhì)。但2011年,發(fā)表在?《Cell 》上的文章表明LncRNA可以被核糖體吸引,并通過檢測翻譯效率相關(guān)的數(shù)值,證明了其中一些LncRNA具有翻譯產(chǎn)生小肽的能力[4]。在2020年的一篇研究中,研究團(tuán)隊使用了眾多的宏觀組學(xué)的分析,包括ribosome profiling、mass spectrometry (MS)-based proteomics、microscopy以及 CRISPR-based genetic screening等方法[5],證明了在人類的細(xì)胞中數(shù)百個LncRNA能表達(dá)出穩(wěn)定的微肽,并參與細(xì)胞的生命活動。研究揭示了編碼微肽與功能性調(diào)控RNA均可作為LncRNA的功能,發(fā)揮作用并不沖突。
LncRNA常用數(shù)據(jù)庫
了解LncRNA功能后,我們應(yīng)該通過強(qiáng)大復(fù)雜的LncRNA數(shù)據(jù)庫進(jìn)行相關(guān)信息或相關(guān)預(yù)測的查詢,下面是一些LncRNA研究常用的數(shù)據(jù)庫匯總,可以對應(yīng)查詢到LncRNA的基因信息、亞細(xì)胞定位、SNP位點(diǎn)、編碼能力及相關(guān)疾病等(表1)。
LncRNA的研究方案
熟悉了LncRNA的相關(guān)功能和常用數(shù)據(jù)庫后,就可以針對LncRNA展開具體的實(shí)驗(yàn)研究。LncRNA的研究思路主要分為三大部分:LncRNA靶點(diǎn)篩選、LncRNA功能研究以及LncRNA相關(guān)的機(jī)制研究,下面我們針對LncRNA的研究方案進(jìn)行具體說明。
圖3. LncRNA研究思路導(dǎo)圖
1.LncRNA靶點(diǎn)篩選LncRNA靶點(diǎn)篩選需要先通過生物信息學(xué)分析、RNA-seq以及芯片技術(shù)等對疾病模型/病例樣本進(jìn)行LncRNA表達(dá)譜分析,用來發(fā)現(xiàn)和篩選差異性表達(dá)的LncRNA,并在疾病模型組織中進(jìn)行驗(yàn)證確認(rèn)。由于LncRNA核定位概率較高,因此功能研究前建議確認(rèn)LncRNA的亞細(xì)胞定位。
1)LncRNA發(fā)現(xiàn)與篩選
LncRNA篩選主要通過高通量LncRNA芯片、直接測序或生物信息學(xué)分析方法篩選差異表達(dá)的LncRNA,也可以通過生物信息學(xué)預(yù)測共表達(dá)網(wǎng)絡(luò)中相關(guān)的LncRNA靶點(diǎn),進(jìn)而確認(rèn)其上下游及關(guān)聯(lián)基因。
2)LncRNA差異表達(dá)驗(yàn)證
通過QPCR方法檢測相關(guān)疾病模型組織或細(xì)胞中,LncRNA差異性表達(dá)及其本底表達(dá)情況,制定后續(xù)對應(yīng)的功能研究方案。
3)LncRNA亞細(xì)胞定位
LncRNA較細(xì)胞質(zhì)定位更多的是呈現(xiàn)出明顯的細(xì)胞核定位狀態(tài)。除了現(xiàn)有數(shù)據(jù)庫查詢和分析方式,一般需要通過FISH實(shí)驗(yàn)對LncRNA亞細(xì)胞定位進(jìn)行輔助驗(yàn)證。
定位在細(xì)胞核的LncRNA,可以與細(xì)胞核內(nèi)的DNA、RNA、蛋白質(zhì)等分子相互作用,實(shí)現(xiàn)染色質(zhì)重塑、mRNA剪接、轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)等調(diào)控功能;
定位在細(xì)胞質(zhì)的LncRNA,多在轉(zhuǎn)錄后水平實(shí)現(xiàn)對編碼基因的調(diào)控,調(diào)節(jié)mRNA翻譯或降解等,也可以參與細(xì)胞內(nèi)復(fù)雜的信號通路網(wǎng)格的調(diào)控。
2.LncRNA的功能研究篩選出差異表達(dá)的LncRNA,并利用QPCR、FISH等技術(shù),檢測LncRNA在細(xì)胞/組織中的分布和表達(dá)量變化。接下來需要通過過表達(dá)、敲低、敲除等調(diào)控方式來改變LncRNA的表達(dá)量,再通過觀察細(xì)胞和動物模型中相關(guān)功能的變化,來明確LncRNA的生物學(xué)功能。
1)LncRNA的過表達(dá)調(diào)控
將全長LncRNA合成并構(gòu)建至非病毒載體(質(zhì)粒、體外合成等)或者病毒載體(慢病毒、腺病毒、腺相關(guān)病毒等)上,以實(shí)現(xiàn)LncRNA的過表達(dá)調(diào)控。樣本組織中的表達(dá)水平:檢測不同組織以及不同階段的表達(dá)水平;細(xì)胞水平上的表達(dá):檢測不同細(xì)胞中,LncRNA的表達(dá)水平。
2) LncRNA的敲低調(diào)控
敲低LncRNA的方式主要分為三類:a. 直接合成ASO;b. 直接合成siRNA靶點(diǎn);c. 質(zhì)粒載體或者病毒載體表達(dá)shRNA 。研究LncRNA敲低調(diào)控時,首要考慮其亞細(xì)胞定位情況,據(jù)文獻(xiàn)報道[6],針對于細(xì)胞核定位的LncRNA,使用ASO明顯比siRNA起到更好的干擾效果;針對于細(xì)胞質(zhì)定位的LncRNA,siRNA發(fā)揮出了更明顯的干擾調(diào)控優(yōu)勢;而對于細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)同時定位的LncRNA,單獨(dú)使用siRNA或ASO都沒有前面兩種效果好,但聯(lián)合使用siRNA和ASO卻能達(dá)到更好的敲低效果。
圖4. LncRNA敲低工具效果對比圖[6]
3)LncRNA的敲除調(diào)控
針對于編碼基因的敲除,非3倍數(shù)堿基的插入/缺失會導(dǎo)致移碼突變,編碼提前終止等現(xiàn)象,實(shí)現(xiàn)編碼基因的敲除,但這些通過影響編碼基因正確編碼的手段并不能對LncRNA達(dá)到敲除效果。因此,要想實(shí)現(xiàn)LncRNA的敲除調(diào)控,則需要在基因組上LncRNA上下游各設(shè)計1個sgRNA,通過片段敲除的方式,實(shí)現(xiàn)LncRNA敲除的效果。
圖5. LncRNA敲除sgRNA位置[7]
3.LncRNA的機(jī)制研究1)LncRNA與DNA/RNA互作
RNA與DNA可以通過堿基互補(bǔ)配對形成RNA-DNA雜合鏈,這種互作形式對于細(xì)胞生命活動維持與遺傳信息調(diào)控具有重要生物學(xué)意義。綜述研究表示,RNA-DNA互作鑒定方法分為三種[8]:a. 針對特定RNA的互作DNA鑒定:使用與目標(biāo)RNA互補(bǔ)配對的探針進(jìn)行pulldown,將富集到的DNA進(jìn)行測序鑒定;b. 針對所有RNA-DNA互作的鑒定:采取兩種捕獲策略,一種是使用嵌合的RNA/DNA雙接頭,可以同步實(shí)現(xiàn)RNA和DNA的捕獲;另一種為分別捕獲互作的RNA和DNA;c. 針對特定DNA位點(diǎn)的RNA-DNA互作鑒定:采用dCas9策略富集與特定DNA區(qū)域互作的RNA。
LncRNA與RNA互作可以通過RNA pulldown、CHIRP等實(shí)驗(yàn)方法。設(shè)計與目標(biāo)RNA序列反向互補(bǔ)的生物素探針,把目標(biāo)RNA拉下來以后,則與其共同作用的RNA片段會被間接富集到鏈霉親和素磁珠上,最后通過qRT-PCR或測序來測定目的RNA。
2)LncRNA與蛋白互作
RNA pull down是用于檢測LncRNA結(jié)合蛋白與LncRNA互作的主要實(shí)驗(yàn)方法。通過體外轉(zhuǎn)錄法標(biāo)記生物素RNA探針,并與胞漿蛋白提取液共孵育,形成RNA-蛋白質(zhì)復(fù)合物。復(fù)合物洗脫后,通過WB實(shí)驗(yàn)檢測特定的LncRNA結(jié)合蛋白是否與LncRNA相互作用。
3)ceRNA機(jī)制
通過網(wǎng)絡(luò)數(shù)據(jù)庫miR CODE、LNCBase等預(yù)測LncRNA-miRNA-mRNA軸上相關(guān)的靶基因。確定靶基因后,通過miRNA的種子序列或自由能結(jié)合方式進(jìn)行miRNA與LncRNA可能結(jié)合位點(diǎn)的預(yù)測,并通過雙熒光素酶實(shí)驗(yàn)進(jìn)行驗(yàn)證。
本期內(nèi)容針對LncRNA的簡介分類、功能、常用數(shù)據(jù)庫、研究思路及功能調(diào)控等四大方面進(jìn)行了詳細(xì)介紹,希望對LncRNA研究方向的小伙伴可以有所裨益。漢恒生物可以提供LncRNA過表達(dá)/干擾/敲除載體的構(gòu)建、以及LncRNA與miRNA/靶基因互作的雙熒光素酶驗(yàn)證服務(wù)等,并擁有專業(yè)的技術(shù)服務(wù)團(tuán)隊為您答疑解惑,有意向的小伙伴歡迎與我們聯(lián)系~下期我們將繼續(xù)為大家介紹另一種重要的非編碼RNA—circRNA,敬請關(guān)注!
參考文獻(xiàn):
[1]?? Lee JT. Epigenetic regulation by long noncoding RNAs. Science (New York, NY). 2012; 338(6113): 1435-1439.
[2]?? Hermans-Beijnsberger S, van Bilsen M, Schroen B. Long non-coding RNAs in the failing heart and vasculature. Noncoding RNA Res. 2018 Apr 14; 3(3): 118-130.
[3]?? Robinson EK, Covarrubias S, Carpenter S. The how and why of lncRNA function: An innate immune perspective. Biochim Biophys Acta Gene Regul Mech. 2020 Apr; 1863(4): 194419.
[4]?? Ingolia NT, Lareau LF, Weissman JS. Ribosome profiling of mouse embryonic stem cells reveals the complexity and dynamics of mammalian proteomes. Cell. 2011 Nov 11; 147(4): 789-802.
[5]?? Chen J, Brunner AD, Cogan JZ, et al. Pervasive functional translation of noncanonical human open reading frames. Science. 2020; 367(6482): 1140-1146.
[6]?? Lennox KA, Behlke MA. Cellular localization of long non-coding RNAs affects silencing by RNAi more than by antisense oligonucleotides. Nucleic Acids Res. 2016 Jan 29; 44(2): 863-77.
[7]?? Han J, Zhang J, Chen L, Shen B, Zhou J, Hu B, Du Y, Tate PH, Huang X, Zhang W. Efficient in vivo deletion of a large imprinted lncRNA by CRISPR/Cas9. RNA Biol. 2014; 11(7): 829-35.
[8]?? Li X, Fu XD. Chromatin-associated RNAs as facilitators of functional genomic interactions. Nat Rev Genet. 2019 Sep; 20(9): 503-519.